DOI: https://doi.org/10.14739/2310-1237.2020.2.212789

Інтерлейкіновий і простагландиновий статус хворих на оперізувальний лишай залежно від ступеня важкості захворювання

O. M. Novytskyi, I. S. Haidash

Анотація


 

Мета роботи вивчити інтерлейкіновий і простагландиновий статус хворих на оперізувальний лишай залежно від ступеня важкості захворювання.

Матеріали та методи. Досліджували кров 27 хворих на оперізувальний лишай (ОЛ) віком від 52 до 69 років; 11 (40,7 %) жінок, 16 (59,3 %) чоловіків. Легкий перебіг ОЛ визначили у 7 (25,9 %) пацієнтів, середньотяжкий – у 12 (44,4 %), тяжкий – у 8 (29,6 %) хворих. Контрольна група – 12 практично здорових осіб (7 чоловіків і 5 жінок віком 50–67 років), які раніше на ОЛ не хворіли, але в дитинстві хворіли на вітряну віспу.

Кількісний вміст інтерлейкінів (IL), фактора некрозу пухлин α (TNFα), простагландинів (PG), тромбоксану (TXB2) і матриксної металопротеїнази-8 (ММР-8) у сироватці крові визначили твердофазним імуноферментним методом. Статистичне опрацювання результатів дослідження виконали, використовуючи критерій Манна–Уітні та програму Statistica v. 10.0.

Результати. Клінічна маніфестація ОЛ супроводжується збільшенням у сироватці крові хворих концентрацій цитокінів (IL-1β, IL-2, IL-4, IL-6, IL-8, IL-10, TNFα), простаноїдів (PGE2, PGF2α, 6KPGF1α, TXB2) і матриксної протеїнази-8 (ММР-8). Ступінь зміни інтерлейкінового та простагландинового статусу залежить від ступеня тяжкості ОЛ, найменшим є в разі легкого перебігу ОЛ, найбільшим – при важкому перебігу. В інтерлейкіновому статусі хворих на ОЛ ступені збільшення концентрацій прозапальних цитокінів (IL-1β, IL-6, IL-8, TNFα) переважають над ступенями збільшення цитокінів із протизапальними властивостями (IL-2, IL-4, IL-10). У гострому періоді ОЛ у простагландиновому статусі хворих спостерігали дисбаланс у системах PGE2/PGF2α і 6KPGF1α/TXB2 з переважанням сироваткових концентрацій PGE2 над PGF2α, TXB2 над 6 KPGF1α.

Висновки. Ступінь порушення інтерлейкінового та простагландинового статусу хворих на оперізувальний лишай прогресивно збільшується зі зростанням ступеня важкості хвороби.

 


Ключові слова


оперізувальний лишай; запалення; інтерлейкіни; простагландини; матриксні металопротеїнази

Повний текст:

PDF

Посилання


Zerboni, L., Sen, N., Oliver, S. L., & Arvin, A. M. (2014). Molecular mechanisms of varicella zoster virus pathogenesis. Nature reviews. Microbiology, 12(3), 197-210. https://doi.org/10.1038/nrmicro3215

Gerada, C., Campbell, T. M., Kennedy, J. J., McSharry, B. P., Steain, M., Slobedman, B., & Abendroth, A. (2020). Manipulation of the Innate Immune Response by Varicella Zoster Virus. Frontiers in immunology, 11, 1. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.00001

Schmidt, S. A., Kahlert, J., Vestergaard, M., Schønheyder, H. C., & Sørensen, H. T. (2016). Hospital-based herpes zoster diagnoses in Denmark: rate, patient characteristics, and all-cause mortality. BMC infectious diseases, 16, 99. https://doi.org/10.1186/s12879-016-1369-6

Cho, S. I., Lee, D. H., & Park, Y. M. (2020). Identification of herpes zoster high-risk group using Charlson comorbidity index: A nationwide retrospective cohort study. The Journal of dermatology, 47(1), 47-53. https://doi.org/10.1111/1346-8138.15115

Dyachenko P. A. (2019). Varicella-zoster virus cns disease clinical features in ukrainian patients. prospective study. Wiadomosci lekarskie (Warsaw, Poland : 1960), 72(9 cz 2), 1765-1768.

Xing, X., Sun, K., & Yan, M. (2020). Delayed Initiation of Supplemental Pain Management is Associated with Postherpetic Neuralgia: A Retrospective Study. Pain physician, 23(1), 65-72.

Jones, D., Alvarez, E., Selva, S., Gilden, D., & Nagel, M. A. (2016). Proinflammatory cytokines and matrix metalloproteinases in CSF of patients with VZV vasculopathy. Neurology(R) neuroimmunology & neuroinflammation, 3(4), e246. https://doi.org/10.1212/NXI.0000000000000246

Khazan, M., Hedayati, M., Robati, R. M., Riahi, S. M., & Nasiri, S. (2018). Impaired oxidative status as a potential predictor in clinical manifestations of herpes zoster. Journal of medical virology, 90(10), 1604-1610. https://doi.org/10.1002/jmv.25204

Esser-von Bieren J. (2017). Immune-regulation and -functions of eicosanoid lipid mediators. Biological chemistry, 398(11), 1177-1191. https://doi.org/10.1515/hsz-2017-0146

Gomes, F., Cunha, F. Q., & Cunha, T. M. (2020). Peripheral nitric oxide signaling directly blocks inflammatory pain. Biochemical pharmacology, 176, 113862. https://doi.org/10.1016/j.bcp.2020.113862

Lind, L., Eriksson, K., & Grahn, A. (2019). Chemokines and matrix metalloproteinases in cerebrospinal fluid of patients with central nervous system complications caused by varicella-zoster virus. Journal of neuroinflammation, 16(1), 42. https://doi.org/10.1186/s12974-019-1428-1

National Scientific Society of Infectious Diseases Doctors. (2014, October 30). Opoyasyvayushchii lishai [herpes zoster] u vzroslykh : klinicheskie rekomendatsii RF [Herpes zoster in adults: clinical recommendations of the Russian Federation].

Nagel, M. A., Choe, A., Rempel, A., Wyborny, A., Stenmark, K., & Gilden, D. (2015). Differential regulation of matrix metalloproteinases in varicella zoster virus-infected human brain vascular adventitial fibroblasts. Journal of the neurological sciences, 358(1-2), 444-446. https://doi.org/10.1016/j.jns.2015.09.349

Khazan, M., Nasiri, S., Riahi, S. M., Robati, R. M., & Hedayati, M. (2019). Measurement of melatonin, indole-dioxygenase, IL-6, IL-18, ferritin, CRP, and total homocysteine levels during herpes zoster. Journal of medical virology, 10.1002/jmv.25484. Advance online publication. https://doi.org/10.1002/jmv.25484

Zajkowska, A., Garkowski, A., Świerzbińska, R., Kułakowska, A., Król, M. E., Ptaszyńska-Sarosiek, I., Nowicka-Ciełuszecka, A., Pancewicz, S., Czupryna, P., Moniuszko, A., & Zajkowska, J. (2016). Evaluation of Chosen Cytokine Levels among Patients with Herpes Zoster as Ability to Provide Immune Response. PloS one, 11(3), e0150301. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0150301

Jin, M., Komine, M., Tsuda, H., Oshio, T., & Ohtsuki, M. (2018). Interleukin-33 is expressed in the lesional epidermis in herpes virus infection but not in verruca vulgaris. The Journal of dermatology, 45(7), 855-857. https://doi.org/10.1111/1346-8138.14334

Gershon, A. A., Brooks, D., Stevenson, D. D., Chin, W. K., Oldstone, M., & Gershon, M. D. (2019). High Constitutive Interleukin 10 Level Interferes With the Immune Response to Varicella-Zoster Virus in Elderly Recipients of Live Attenuated Zoster Vaccine. The Journal of infectious diseases, 219(8), 1338-1346. https://doi.org/10.1093/infdis/jiy660

Weinberg, A., Canniff, J., Rouphael, N., Mehta, A., Mulligan, M., Whitaker, J. A., & Levin, M. J. (2017). Varicella-Zoster Virus-Specific Cellular Immune Responses to the Live Attenuated Zoster Vaccine in Young and Older Adults. Journal of immunology (Baltimore, Md. : 1950), 199(2), 604-612. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1700290

Lone, A. M., & Taskén, K. (2013). Proinflammatory and immunoregulatory roles of eicosanoids in T cells. Frontiers in immunology, 4, 130. https://doi.org/10.3389/fimmu.2013.00130

Ma, W., St-Jacques, B., & Duarte, P. C. (2012). Targeting pain mediators induced by injured nerve-derived COX2 and PGE2 to treat neuropathic pain. Expert opinion on therapeutic targets, 16(6), 527-540. https://doi.org/10.1517/14728222.2012.680955

St-Jacques, B., & Ma, W. (2014). Peripheral prostaglandin E2 prolongs the sensitization of nociceptive dorsal root ganglion neurons possibly by facilitating the synthesis and anterograde axonal trafficking of EP4 receptors. Experimental neurology, 261, 354-366. https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2014.05.028

Jiang, H., Yu, X., Ren, X., & Tu, Y. (2016). Electroacupuncture alters pain-related behaviors and expression of spinal prostaglandin E2 in a rat model of neuropathic pain. Journal of traditional Chinese medicine = Chung i tsa chih ying wen pan, 36(1), 85-91. https://doi.org/10.1016/s0254-6272(16)30013-9

Kanda, H., Kobayashi, K., Yamanaka, H., Okubo, M., & Noguchi, K. (2017). Microglial TNFα Induces COX2 and PGI2 Synthase Expression in Spinal Endothelial Cells during Neuropathic Pain. eNeuro, 4(2), ENEURO.0064-17.2017. https://doi.org/10.1523/ENEURO.0064-17.2017

Schuh, C. D., Pierre, S., Weigert, A., Weichand, B., Altenrath, K., Schreiber, Y., Ferreiros, N., Zhang, D. D., Suo, J., Treutlein, E. M., Henke, M., Kunkel, H., Grez, M., Nüsing, R., Brüne, B., Geisslinger, G., & Scholich, K. (2014). Prostacyclin mediates neuropathic pain through interleukin 1β-expressing resident macrophages. Pain, 155(3), 545-555. https://doi.org/10.1016/j.pain.2013.12.006




ПАТОЛОГІЯ   Лицензия Creative Commons
Запорізький державний медичний університет